产品货号:
CZ019
中文名称:
NHS磁珠
英文名称:
BalBeads Magshow NHS(30-150μm)
产品规格:
1ml|5ml|50ml
发货周期:
1~3天
产品价格:
询价
本产品是以天然的亲水性高分子琼脂糖为基材的多孔微球,粒径为30~150μm表面为NHS基团修饰的磁珠。能够与带有伯胺基团的蛋白和其他分子形成稳定的肽键,用于亲和纯化抗体、抗原和其他生物分子。与传统的羧基、氨基磁珠相比,表面含NHS基团的磁珠无需事先采用EDC/NHS或戊二醛进行活化,只需简单地将含伯氨基的生物配体溶解在试剂盒自带的Coupling Buffer中,室温下将蛋白与NHS磁珠混合1~2h便可将生物配体共价偶联到磁珠上,具有操作简单、偶联条件温和、生物配体偶联快速高效等优点。磁珠偶联过程必需在不含任何氨基的缓冲溶剂中进行。人工操作时,使用磁性分离架实现磁珠与溶剂分离。也可采用自动化设备操作,自动化操作适合用于多样品的筛选。
磁珠基材:交联磁性琼脂糖微球
磁珠粒径:30~150μm
配基:N-羟基琥珀酰亚胺
配基密度:20~30μmol/mL磁珠
结合能力:20~30mg兔IgG/mL磁珠
磁珠悬液浓度:20% (v/v)磁珠悬液(1mL磁珠悬液中含有200μL磁珠)
保存液:无水异丙醇
保存:2~8℃,有效期一年。
蛋白偶联操作流程图及优化点
说明:
以下操作过程以取磁珠样品500μL,采用1.5mL EP管为例介绍。用户可根据自身需求按比例调整。
相关搜索:NHS磁珠,BalBeads Magshow NHS(30-150μm)
- 简便,无需活化,可直接与生物配体共价偶联;
- 高效,生物配基偶联效率可达90%以上,大大高于羧基磁珠,同时配基的结合载量更高;
- 快速,1~2h便可完成生物配基偶联;
- 温和,室温或4℃偶联,偶联体系pH为5~9;
- 稳定,形成稳定的酰胺键,防止配基脱落。
- 良好的生物相容性,减少非特异性吸附。
磁珠基材:交联磁性琼脂糖微球
磁珠粒径:30~150μm
配基:N-羟基琥珀酰亚胺
配基密度:20~30μmol/mL磁珠
结合能力:20~30mg兔IgG/mL磁珠
磁珠悬液浓度:20% (v/v)磁珠悬液(1mL磁珠悬液中含有200μL磁珠)
保存液:无水异丙醇
保存:2~8℃,有效期一年。
- 磁珠对水分敏感。为了保证产品质量,在取样之后需立即盖上瓶盖,并用封口膜密封,于4℃保存。
- 禁止将磁珠干燥或冷冻。干燥和冷冻操作可能导致磁珠的聚集从而丧失结合活性。
- 可通过间接法测定反应前后蛋白含量,或通过直接法检测偶联到磁珠表面的蛋白含量,使用280nm附近的波长来测定蛋白含量是不可取的,因为NHS基团在280nm波长附近有很强的吸收,会严重干扰检测结果。蛋白稳定剂(如BSA,gelatin)会抑制抗体与磁珠的结合,因此在磁珠偶联抗体过程中,需要确保抗体保存体系中不存在含伯氨基的蛋白稳定剂。
- 缓冲液中含有带伯胺的物质会抑制蛋白质偶联到磁珠表面,去除伯胺物质可采用透析和脱盐的方法。
- NHS基团易水解,故在用Washing Buffer A洗涤时,一定要参照说明书进行。
- 蛋白溶液要预先配制好,Washing Buffer A洗涤完毕后,要立即加入蛋白溶液进行偶联反应。
- 蛋白质和磁珠的偶联效率因蛋白质种类和性质差异而不同。一般而言,蛋白质浓度为≥3.0mg/mL时利于蛋白质偶联;然而,对于不同的蛋白其浓度需要优化。
序号 | 试剂名称 | 备注 |
① | Washing Buffer A | 1mM盐酸,使用前冷却到4℃。 |
② | Coupling Buffer A | 100mM 2-吗啉乙磺酸MES,pH4.8(用于等电点小于7的生物分子的偶联) |
③ | Coupling Buffer B | 200mM NaHCO3,pH8.3(用于等电点大于7的生物分子的偶联) |
④ | Blocking Buffer | 3M乙醇胺,pH9.0 |
⑤ | Storage Buffer | 1×PBS,可根据需求添加0.1% proclin-300 |
蛋白偶联操作流程图及优化点
1. | 蛋白溶液的配制 | ||
↓ | |||
2. | 磁珠的洗涤 | ||
↓ | { | 优化点1:Coupling Buffer的种类。首先通过实验确定最合适的Coupling Buffer | |
3. | 蛋白偶联 | ||
↓ | 优化点2:确定合适的Coupling Buffer后,再通过实验优化蛋白溶液的浓度 | ||
4. | 封闭 | ||
↓ | |||
5. | 磁珠保存 |
说明:
- 其中磁珠洗涤要严格按照说明书采用冷却的Washing Buffer A(①)快速洗涤,以防磁珠在洗涤过程中NHS基团水解;
- 蛋白偶联过程中,首先要通过实验确定合适的Coupling Buffer(主要包括Coupling Buffer A(②)、Coupling Buffer B(③)、50mM硼酸溶液,pH8.5、100mM磷酸缓冲液,100mM NaCl,pH7.4这四种);
- 确定合适的Coupling Buffer后,再以此Coupling Buffer为基础,确定合适的偶联蛋白浓度,因为蛋白浓度越高,偶联到磁珠上的蛋白的量会越大(这是由于NHS基团跟蛋白偶联和NHS基团本身水解是一对竞争反应)。当然此处要综合考虑使用性能和成本,有些客户偶联少量的蛋白便可满足使用需求,这时采用低浓度的蛋白便可,这样可以降低成本。
- 封闭这一步可以采用试剂盒中自带的3M乙醇胺,也可使用Tris缓冲液(100mM Tris-HCl,150mM NaCl,pH8.0),封闭时间不得低于2h,如果化学封闭后背景仍然很高,还可以额外加一步BSA封闭。
以下操作过程以取磁珠样品500μL,采用1.5mL EP管为例介绍。用户可根据自身需求按比例调整。
- 蛋白溶液配制
取适量待偶联蛋白用Coupling Buffer溶解,配成浓度为≥3.0mg/mL的蛋白溶液。已经保存于buffer中的蛋白,需要通过透析或者脱盐的方法彻底除去原有buffer里含伯胺基的物质,然后再用Coupling Buffer配成浓度为≥3.0mg/mL的蛋白溶液,将配制好的蛋白溶液于4℃保存备用。
注:
① 为了达到更好的性能,蛋白浓度≥3.0mg/mL,这样偶联效率会更高,此处需综合考虑成本和使用要求;
② 蛋白溶液中不能含有带伯氨基的成分,比如Tris,甘氨酸,明胶,BSA等; - 磁珠清洗
- 取500μL 20%的磁珠悬浮液于1.5mL EP管中。
注:磁珠取样前要反复颠倒、使用涡旋振荡器使其混合均匀,以保证实验的同一性,每取一次样需要重新混匀。 - 将EP管置于磁性分离架内,富集磁珠,去除上清液。
- 加1mL 2~8℃的Washing Buffer A(①)于离心管中,涡旋15 s,使磁珠混合均匀。
- 将EP管置于磁性分离架内,富集磁珠,去除上清液。
- 取500μL 20%的磁珠悬浮液于1.5mL EP管中。
- 蛋白质固定
- 加200μL蛋白溶液于EP管中,涡旋30 s,使其混合均匀。
注:磁珠洗涤后要立即加入蛋白溶液。 - 将EP管涡旋15 s,置于垂直混合仪上,室温混合2~4h。如果垂直混合不均匀,则反应前30min,每隔5min取下EP管涡旋15 s。此后,每隔15min,取下EP管涡旋15 s。
注:如有需要可以在4℃反应过夜。 - 采用磁性分离架富集磁珠,保存流穿液。
- 加200μL蛋白溶液于EP管中,涡旋30 s,使其混合均匀。
- 磁珠封闭
- 加1mL Blocking Buffer(④)于EP管中,涡旋30 s,将EP管置于磁性分离架内,富集磁珠,弃上清液。
注:Blocking Buffer(④)除了试剂盒中提供的3M乙醇胺外,也可以使用100mM Tris-HCl,150mM NaCl,pH8.0等其它封端试剂。 - 重复“步骤4.a.”四次。
- 加1mL Blocking Buffer(④)于EP管中,涡旋30 s,将EP管置于垂直混合仪中室温反应2h。
- 将EP管置于磁性分离架内,富集磁珠,弃上清液。
- 加1mL超纯水于EP管中,充分混合,用磁力架富集磁珠,弃上清液。
- 加1mL Blocking Buffer(④)于EP管中,涡旋30 s,将EP管置于磁性分离架内,富集磁珠,弃上清液。
- 保存
- 加1mL Storage Buffer(⑤)(比如含0.05%叠氮化钠的PBS缓冲液,或者客户根据自己实际需求选择合适的保存溶液)于EP管中,充分混合,用磁力架富集磁珠,弃上清液。重复该操作2次。
- 加入1mL Storage Buffer(⑤)于EP管中,充分混合,4℃保存备用。
注:最终偶联蛋白的磁珠浓度为10% (v/v)。
- 加1mL Storage Buffer(⑤)(比如含0.05%叠氮化钠的PBS缓冲液,或者客户根据自己实际需求选择合适的保存溶液)于EP管中,充分混合,用磁力架富集磁珠,弃上清液。重复该操作2次。
相关搜索:NHS磁珠,BalBeads Magshow NHS(30-150μm)